7.1.1. Ácaros
-
Araña roja.
Tetranychus
urticae (koch) (ACARINA:
TETRANYCHIDAE), T. Turkestani (Ugarov & Nikolski) (ACARINA: TETRANYCHIDAE)
y T. ludeni (Tacher)
(ACARINA: TETRANYCHIDAE). La primera especie citada es la más común en los
cultivos hortícolas protegidos de la provincia de Almería, pero la biología,
ecología y daños causados son similares, por lo que se abordan las tres
especies de manera conjunta.
Se desarrolla en el envés de las hojas causando decoloraciones,
punteaduras o manchas amarillentas que pueden apreciarse en el haz como primeros
síntomas. Con mayores poblaciones se produce desecación o incluso de foliación.
Los ataques más graves se producen en los primeros estados fenológicos. Las
temperaturas elevadas y la escasa humedad relativa favorecen el desarrollo de la
plaga. En poroto y sandía con niveles altos de plaga pueden producirse daños
en los frutos.
A.1. Métodos preventivos y técnicas culturales
-
Desinfección de estructuras y suelo previa a la plantación en parcelas
con historial de araña roja.
-
Eliminación de malas hierbas y restos de cultivo.
-
Evitar los excesos de nitrógeno.
-
Vigilancia de los cultivos durante las primeras fases del desarrollo.
A.2. Control biológico mediante enemigos
naturales
Principales especies
depredadoras de huevos, larvas y adultos de araña roja: Amblyseius
californicus, Phytoseiulus persimilis (especies autóctonas y empleadas en
sueltas), Feltiella acarisuga (especie autóctona).
A.3. Control químico
Materias activas:
abamectina, aceite de verano, acrinatrin, amitraz, amitraz + bifentrin,
bifentrin, bromopropilato, dicofol, dicofol + tetradifon, dicofol + hexitiazox,
dinobuton, dinobuton + tetradifon, dinobuton + azufre, fenbutestan,
fenpiroximato, hexitiazox, propargita, tebufenpirad, tetradifón.
7.1.2. Insectos
A.
Mosca blanca
Trialeurodes
vaporariorum (West) (HOMOPTERA: ALEYRODIDAE) y Bemisia tabaci (Genn.)
(HOMOPTERA: ALEYRODIDAE). Las partes jóvenes de las plantas son colonizadas por
los adultos, realizando las puestas en el envés de las hojas. De éstas emergen
las primeras larvas, que son móviles. Tras fijarse en la planta pasan por tres
estadios larvarios y uno de pupa, este último característico de cada especie.
Los daños directos (amarilleamientos y debilitamiento de las plantas) son
ocasionados por larvas y adultos al alimentarse, absorbiendo la savia de las
hojas. Los daños indirectos se deben a la proliferación de negrilla sobre la
melaza producida en la alimentación, manchando y depreciando los frutos y
dificultando el normal desarrollo de las plantas. Ambos tipos de daños se
convierten en importantes cuando los niveles de población son altos. Otro daños
indirectos se producen por la transmisión de virus. Trialurodes vaporariorun
es transmisora del virus del amarilleamiento en cucurbitáceas. Bemisia
tabaci es potencialmente transmisora de un mayor número de virus en
cultivos ortícolas y en la actualidad actua como transmisora del Virus del
rizado amarillo de tomate (TYLCV), conocido como “virus de la cuchara”.
A.1. Métodos preventivos y técnicas culturales
-
Colocación de mallas en las bandas de los invernaderos.
-
Limpieza de malas hierbas y restos de cultivos.
-
No asociar cultivos en el mismo invernadero.
-
No abandonar los brotes al final del ciclo, ya que los brotes jóvenes
atraen a los adultos de mosca blanca.
-
Colocación de trampas cromáticas amarillas
A.2. Control biológico mediante enemigos
naturales
Principales parásitos de larvas de mosca blanca
-
Trialeurodes vaporariorum. Fauna auxiliar autóctona: Encarsia
formosa, Encarsia transvena, Encarsia lutea, Encarsia tricolor, Cyrtopeltis
tenuis. Fauna auxiliar empleada en sueltas: Encarsia formosa, Eretmocerus
californicus.
-
Bemisia tabaci. Fauna auxiliar autóctona: Eretmocerus mundus,
Encarsia transvena, Encarsia lutea, Cyrtopeltis tenuis. Fauna auxiliar
empleada en sueltas: Eretmocerus californicus
A.3. Control químico
Materias activas: alfa-cipermetrin, Beauveria bassiana, bifentrin,
buprofezin, buprofezin + metil-pirimifos, cipermetrin + malation, deltametrin,
esfenvalerato + metomilo, etofenprox + metomilo, fenitrotion + fenpropatrin,
fenpropatrin, flucitrinato, imidacloprid, lambda cihalotrin, metil-pirimifos,
metomilo + piridafention, piridaben, piridafention, teflubenzuron, tralometrina.
B.
Pulgón
Aphis gossypii
(Sulzer) (HOMOPTERA: APHIDIDAE) y Myzus persicae (Glover) (HOMOPTERA:
APHIDIDAE). Son las especies de pulgón más comunes y abundantes en los
invernaderos. Presentan polimorfismo, con hembras aladas y ápteras de
reproducción vivípara. Las formas áptera del primero presentan sifones negros
en el cuerpo verde o amarillento, mientras que las de Myzus son
completamente verdes (en ocasiones pardas o rosadas). Forman colonias y se
distribuyen en focos que se dispersan, principalmente en primavera y otoño,
mediante las hembras aladas.
B.1. Métodos preventivos y técnicas
culturales
-
Colocación de mallas en las bandas del invernadero.
-
Eliminación de malas hierbas y restos del cultivo anterior.
-
Colocación de trampas cromáticas amarillas.
B.2. Control biológico mediante enemigos
naturales
-
Especies depredadoras autóctonas: Aphidoletes aphidimyza.
-
Especies parasitoides autóctonas: Aphidius matricariae, Aphidius
colemani, Lysiphlebus testaicepes.
-
Especies parasitoides empleadas en sueltas: Aphidius colemani.
B.3. Control químico
Materias activas: acefato, alfa-cipermetrin, bifentrin, carbosulfan,
cipermetrin, cipermetrin + azufre, cipermetrin + fenitrotion, cipermetrin +
metomilo, cipermetrin + malation, deltametrin, deltametrin+ heptenofos,
endosulfan, endosulfan + metomilo, endosulfan + pirimicarb, esfenvalerato,
esfenvalerato + fenitrotion, etofenprox, etofenprox + metomilo, fenitrotion,
fenitrotion + fenpropatrin, fenitrotion + fenvalerato, fenpropatrin, fen
valerato, flucitrinato, fosalon, imidacloprid, lambda cihalotrin, lindano,
lindano + malation, malation, metil-pirimifos, metomilo, metomilo + permetrin,
metomilo + piridafention, permetrin,
pirimicarb, propoxur.
Continuación del
apartado 7.1.2. INSECTOS en la siguiente página.
