7.1.1. Ácaros
-
Araña roja.
Tetranychus
urticae (koch) (ACARINA:
TETRANYCHIDAE), T. Turkestani (Ugarov & Nikolski) (ACARINA: TETRANYCHIDAE)
y T. ludeni (Tacher)
(ACARINA: TETRANYCHIDAE). La primera especie citada es la más común en los
cultivos hortícolas protegidos de la provincia de Almería, pero la biología,
ecología y daños causados son similares, por lo que se abordan las tres
especies de manera conjunta.
Se desarrolla en el envés de las hojas
causando decoloraciones, punteaduras o manchas amarillentas que pueden
apreciarse en el haz como primeros síntomas. Con mayores poblaciones se
produce desecación o incluso de foliación. Los ataques más graves se
producen en los primeros estados fenológicos. Las temperaturas elevadas y la
escasa humedad relativa favorecen el desarrollo de la plaga. En poroto y sandía
con niveles altos de plaga pueden producirse daños en los frutos.
A.1. Métodos preventivos y técnicas
culturales
- Desinfección de estructuras y suelo previa a la plantación en
parcelas con historial de araña roja.
- Eliminación de malas hierbas y restos de cultivo.
- Evitar los excesos de nitrógeno.
- Vigilancia de los cultivos durante las primeras fases del desarrollo.
A.2. Control biológico mediante
enemigos naturales
Principales
especies depredadoras de huevos, larvas y adultos de araña roja: Amblyseius
californicus, Phytoseiulus persimilis (especies autóctonas y empleadas
en sueltas), Feltiella acarisuga (especie autóctona).
A.3. Control químico
Materias activas:
abamectina, aceite de verano, acrinatrin, amitraz, amitraz + bifentrin,
bifentrin, bromopropilato, dicofol, dicofol + tetradifon, dicofol +
hexitiazox, dinobuton, dinobuton + tetradifon, dinobuton + azufre,
fenbutestan, fenpiroximato, hexitiazox, propargita, tebufenpirad, tetradifón.
7.1.2.
Insectos
A.
Mosca blanca
Trialeurodes
vaporariorum (West) (HOMOPTERA: ALEYRODIDAE) y Bemisia tabaci (Genn.)
(HOMOPTERA: ALEYRODIDAE). Las partes jóvenes de las plantas son colonizadas
por los adultos, realizando las puestas en el envés de las hojas. De éstas
emergen las primeras larvas, que son móviles. Tras fijarse en la planta pasan
por tres estadios larvarios y uno de pupa, este último característico de
cada especie. Los daños directos (amarilleamientos y debilitamiento de las
plantas) son ocasionados por larvas y adultos al alimentarse, absorbiendo la
savia de las hojas. Los daños indirectos se deben a la proliferación de
negrilla sobre la melaza producida en la alimentación, manchando y
depreciando los frutos y dificultando el normal desarrollo de las plantas.
Ambos tipos de daños se convierten en importantes cuando los niveles de
población son altos. Otro daños indirectos se producen por la transmisión
de virus. Trialurodes vaporariorun es transmisora del virus del
amarilleamiento en cucurbitáceas. Bemisia tabaci es potencialmente
transmisora de un mayor número de virus en cultivos ortícolas y en la
actualidad actua como transmisora del Virus del rizado amarillo de tomate (TYLCV),
conocido como “virus de la cuchara”.
A.1. Métodos preventivos y técnicas
culturales
- Colocación de mallas en las bandas de los invernaderos.
- Limpieza de malas hierbas y restos de cultivos.
- No asociar cultivos en el mismo invernadero.
- No abandonar los brotes al final del ciclo, ya que los brotes jóvenes
atraen a los adultos de mosca blanca.
- Colocación de trampas cromáticas amarillas
A.2. Control biológico mediante
enemigos naturales
Principales parásitos de larvas de mosca blanca
- Trialeurodes vaporariorum. Fauna auxiliar autóctona: Encarsia
formosa, Encarsia transvena, Encarsia lutea, Encarsia tricolor, Cyrtopeltis
tenuis. Fauna auxiliar empleada en sueltas: Encarsia formosa,
Eretmocerus californicus.
- Bemisia tabaci. Fauna auxiliar autóctona: Eretmocerus
mundus, Encarsia transvena, Encarsia lutea, Cyrtopeltis tenuis. Fauna
auxiliar empleada en sueltas: Eretmocerus californicus
A.3. Control químico
Materias activas: alfa-cipermetrin, Beauveria bassiana,
bifentrin, buprofezin, buprofezin + metil-pirimifos, cipermetrin + malation,
deltametrin, esfenvalerato + metomilo, etofenprox + metomilo, fenitrotion +
fenpropatrin, fenpropatrin, flucitrinato, imidacloprid, lambda cihalotrin,
metil-pirimifos, metomilo + piridafention, piridaben, piridafention,
teflubenzuron, tralometrina.
B.
Pulgón
Aphis gossypii
(Sulzer) (HOMOPTERA: APHIDIDAE) y Myzus persicae (Glover) (HOMOPTERA:
APHIDIDAE). Son las especies de pulgón más comunes y abundantes en los
invernaderos. Presentan polimorfismo, con hembras aladas y ápteras de
reproducción vivípara. Las formas áptera del primero presentan sifones
negros en el cuerpo verde o amarillento, mientras que las de Myzus son
completamente verdes (en ocasiones pardas o rosadas). Forman colonias y se
distribuyen en focos que se dispersan, principalmente en primavera y otoño,
mediante las hembras aladas.
B.1. Métodos preventivos y técnicas
culturales
- Colocación de mallas en las bandas del invernadero.
- Eliminación de malas hierbas y restos del cultivo anterior.
- Colocación de trampas cromáticas amarillas.
B.2. Control biológico mediante
enemigos naturales
- Especies depredadoras autóctonas: Aphidoletes aphidimyza.
- Especies parasitoides autóctonas: Aphidius matricariae, Aphidius
colemani, Lysiphlebus testaicepes.
- Especies parasitoides empleadas en sueltas: Aphidius colemani.
B.3. Control químico
Materias activas: acefato, alfa-cipermetrin,
bifentrin, carbosulfan, cipermetrin, cipermetrin + azufre, cipermetrin +
fenitrotion, cipermetrin + metomilo, cipermetrin + malation, deltametrin,
deltametrin+ heptenofos, endosulfan, endosulfan + metomilo, endosulfan +
pirimicarb, esfenvalerato, esfenvalerato + fenitrotion, etofenprox,
etofenprox + metomilo, fenitrotion, fenitrotion + fenpropatrin, fenitrotion
+ fenvalerato, fenpropatrin, fen valerato, flucitrinato, fosalon,
imidacloprid, lambda cihalotrin, lindano, lindano + malation, malation,
metil-pirimifos, metomilo, metomilo + permetrin, metomilo + piridafention,
permetrin, pirimicarb, propoxur.
Continuación del
apartado 7.1.2. INSECTOS en la siguiente página.
